Слайд 2 Содержание лекции
1. Репликация ДНК
2.Принципы транскрипции
3. Биосинтез белка. Стадии биосинтеза
4.
Основные элементы генома. Геном
митохондрий
5. Патология обмена белков
Процесс репликации начинается со
специфической точки в кольцевой
ДНК ( область начала репликации ).
При этом образуются две
репликационные вилки, которые
двигаются в противоположных
направлениях, поэтому две цепи
реплицируются одновременно
Слайд 4
Каждая репликативная вилка включает
по две молекулы ДНК-полимеразы (3), которые связаны с вспомогательными
белками. К последним относят- ДНК-топоизомеразы( гиразы), которые раскручивают плотно свернутую двойную спираль ДНК, и хеликазы, которые расплетают двухтяжевую ДНК на две цепи.
Слайд 5 Матричная цепь ДНК всегда
читается в направлении 3'—5',
поэтому только одна цепь
считывается непрерывно ( это
ведущая цепь). На отстающей
цепи информация считывается в
направлении, противоположном
движению репликативной вилки.
Слайд 6 Поэтому на второй матричной цепи вначале синтезируются короткие
фрагменты новой цепи ДНК, так называемые фрагменты Оказаки (ОF). Каждый
такой фрагмент начинается с короткой РНК- затравки( праймера), которая необходима для действия ДНК-полимеразы –III
Слайд 8
Праймер синтезируется
специальной РНК-полимеразой,
с образованием
олигорибонуклеотида, и
достраивается ДНК-
полимеразой –III, до фрагмента
с длиной 1000-2000
дезоксирибонуклеотидных звеньев.
Слайд 9
Далее синтез этого
фрагмента прекращается, и новый синтез начинается со следующего РНК-праймера.
Индивидуальные фрагменты Оказаки первоначально не связаны друг с другом и все имеют РНК на своих 5- концах.
Слайд 10 Далее ДНК – полимераза 1 начинает замещать РНК-праймер
последовательностью ДНК. В завершение остающиеся одноцепочечные разрывы репарируются ДНК- лигазой
Слайд 11 В синтезированной таким
образом двойной
спирали ДНК только
одна
из цепей синтезирована
заново. Это
полуконсервативный
путь репликации.
репликация начинается со специфической точки в кольцевой ДНК (область начала
репликации) и продолжается в обоих направлениях.
В результате образуются две репликативные вилки, которые продвигаются в противоположных направлениях, т. е. обе цепи реплицируются одновременно. Исходная ДНК (1) окрашена в голубой и фиолетовый цвета, а вновь синтезирующаяся — в розовый и оранжевый. В функционировании каждой вилки принимают участие множество различных белков, из которых здесь указаны наиболее важные.
Слайд 13 Каждая репликативная вилка (2) включает
по крайней мере две молекулы ДНК-полимеразы III, ассоциированные с несколькими
вспомогательными белками. К последним относятся ДНК- топоизомеразы (гиразы), которые раскручивают плотно свернутую двойную спираль ДНК, и хеликазы, которые расплетают двухтяжевую ДНК на две цепи.
Поскольку матричная цепь всегда читается в направлении 3'→5', только одна из цепей может считываться непрерывно (розовая/фиолетовая;
Другая цепь (голубого цвета) считывается в направлении, противоположном движению репликативной
вилки. В результате на матрице вначале синтезируются короткие фрагменты новой цепи ДНК (зеленый/оранжевый), так называемые фрагменты Оказаки (OF). Каждый фрагмент начинается с короткой РНК-затравки (праймера, зеленого цвета), необходимой для функционирования ДНК-полимеразы.
Праймер синтезируется специальной РНК-полимеразой («праймаза», ДНК-полимераза III
достраивает этот праймер до фрагмента ДНК длиной 1000-2000 дезоксинуклеотидных звеньев (оранжевого цвета). Синтез этого фрагмента далее прерывается, и новый синтез начинается со следующего РНК-праймера. Индивидуальные фрагменты Оказаки первоначально не связаны друг с другом и все еще имеют РНК на 5'-концах
Слайд 16
На некотором расстоянии от репликативной вилки
ДНК-полимераза I начинает замещать РНК-праймер последовательностью ДНК.
В завершение остающиеся
одноцепочечные разрывы репарируются ДНК- лигазой. В образованной таким образом двойной спирали ДНК только одна из цепей синтезирована заново. Поэтому говорят, что репликация ДНК происходит по полуконсервативному механизму.
Слайд 17
Субстратами для РНК-полимераз служат рибонуклеозид-трифосфаты (активированные нуклеотиды). Весь процесс транскрипции
осуществляется за счет энергии макроэргических связей актвированных нуклеотидов.
Условия транскрипции
Принципы
транскрипции:
1. Комплементарность.
2. Антипараллельность.
3. Униполярность.
4. Беззатравочность.
5. Асимметричность.
Слайд 20 Транскрипция осуществляется ДНК-зависимыми РНК-полимеразами. Они действуют
подобно ДНК-полимеразам, за исключением того,что включают в синтезируемую цепь РНК
(RNA) рибонуклеотиды, вместо дезоксирибонуклеотидов , а также не нуждаются в праймерах. Эукариотические клетки обычно содержат три различных типа РНК-полимераз.
Слайд 22
РНК-полимераза -1 катализирует синтез РНК с коэффициентом
седиментации 45S, которая является предшественником трех различных рибосомных РНК
( 28S rRNA, 18S rRNa,
5,8S rRNA).
Слайд 23 РНК-полимераза-2 синтезирует гяРНК, которые
служат предшественниками мРНК и мяРНК.
РНК-полимераза-3
транскрибирует гены, кодирующие тРНК, 5S РНК и некоторые мяРНК
Слайд 25
Как уже упоминалось, РНК-полимераза
II связывается с 3'-концом промоторного участка. Последовательность, обеспечивающая это связывание,
так называемый ТАТА-бокс, короткий А- и Т-обогащенный участок, последовательность которого слегка варьирует у разных генов. Типичная последовательность (каноническая) — ...ТАТААА... . Для взаимодействия полимеразы с этим участком необходимы несколько белков, основных факторов транскрипции. Дополнительные факторы могут либо стимулировать, либо ингибировать этот процесс (контроль транскрипции)
Слайд 26
После инициации синтеза (2), РНК-полимераза движется в
направлении 3'→5' матричной цепи.
В процессе инициации фермент разделяет короткий
участок двойной спирали ДНК на две отдельные цепочки. Нуклеозидтрифосфаты связываются комплементарно на кодирующей цепочке ДНК водородными связями и шаг за шагом присоединяются к растущей молекуле РНК (3). Вскоре после начала элонгации 5'-конец транскрипта защищается «кэпом».Как только транскрипция доходит до сайта полиаденилирования (обычно это последовательность ...ААТААА...),
После этого полимераза прекращает транскрипцию и диссоциирует от ДНК.
Слайд 29
Большинство клеток организма содержит полный
набор генов. Но обычно из этого набора используется крайне незначительный
объем информации. Постоянно транскрибируются только те гены, которые кодируют структурные белки и ферменты промежуточного метаболизма. Кроме этих постоянно необходимых генов имеется много других генов, активных только в определенных типах клеток, при определенных метаболических условиях или во время дифференцировки
Слайд 30 Контроль транскрипции осуществляется структурами двух
типов. Большинство генов содержат в своем промоторном участке несколько коротких
сегментов ДНК (DNA) (регуляторные элементы, цис-действующие элементы), с которыми могут связываться факторы транскрипции. Регуляторные элементы, стимулирующие транскрипцию связанных с ними генов, называются энхансерами (усилителями, от англ. enhancer). Белки, подавляющие транскрипцию. — сайленсерами (успокоителями, от англ. silencer).
Слайд 31 Факторы транскрипции — это белки,
т. е. продукты других, независимых генов.
Поэтому их называют опосредованно действующими факторами. Для процесса транскрипции генов требуются не только РНК- полимераза, но и другие белки, называемые основными факторами транскрипции. Установлено, что у эукариот таким фактором является ТАТА-связывающий белок (ТСБ, англ. ТАТА-Вох Binding Protein, TBP), который взаимодействует с основным регуляторным элементом. ТАТА-боксом, присутствующим в большинстве генов
Слайд 32 Дополнительные факторы могут влиять на
инициацию транскрипции, связываясь с
другими регуляторными элементами.
Отсюда они взаимодействуют с основным транскрипционным комплексом, либо активируя, либо ингибируя его. Такие факторы активируют, например, комплексы стероидных гормонов с рецепторами.
По завершении транскрипции из гяРНК вырезаются интроны, содержащие некодирующие последовательности.
Слайд 35 Сплайсинг РНК катализируется комплексами белков
с РНК, известными как «малые ядерные рибонуклеопротеидные частицы»
Интроны, входящие в гяРНК (hnRNA), имеют специфические последовательности на 3'- и 5'-концах .На первой стадии сплайсинга ОН-группа аденозилового остатка, расположенного в интроне, атакует (при участии мяРНП) и расщепляет фосфодиэфирную связь на 5'-конце интрона (Одновременно в интроне образуется новая связь, которая придает ему форму петли
На второй стадии терминальная ОН-группа 5'-концевого интрона атакует связь в 3'-конце интрона. В результате оба экзона соединяются, а интрон освобождается.
Слайд 36 В этой реакции принимают участие пять различных
мяРНП (U1, U2, U4, U5 и U6). В каждой из
реакций задействованы несколько белковых молекул и одна молекула мяРНК (snRNA).
Во время сплайсинга комплексы из гяРНК и мяРНП образуют сплайсому. Полагают, что мяРНК в сплайсоме образуют канонические пары друг с другом и с гяРНК и таким образом фиксируют и ориентируют их реакционные группы. Собственно катализ обусловлен РНК-составляющей сплайсомы Такие каталитические РНК носят название рибозимов
Слайд 40 В генной инженерии часто требуется выделить отдельный,
пока еще не охарактеризованный фрагмент ДНК (DNA), например, с целью
определения его полной нуклеотидной последовательности. Такая задача решается путем создании библиотек кДНК. Библиотека ДНК состоит из большого количества векторных молекул ДНК, содержащих различные фрагменты чужеродной ДНК. Например, возможно получить все молекулы мРНК клетки в виде фрагментов ДНК - кДНК (англ. complementary DNA, cDNA) — и произвольно внедрить эти копии в векторные молекулы. Библиотека генов может быть получена путем расщепления ДНК клетки на небольшие фрагменты рестриктазами (см. с. 254) и последующего встраивания этих фрагментов в векторную ДНК.
Слайд 41В качестве векторов для получения библиотек ДНК используются бактериофаги (сокращенно:
фаги). Фаги — это вирусы, которые инфицируют бактерии, где их
геном реплицируется вместе с бактериальным геномом (см. с. 390). Библиотеки генов удобны тем, что в них легко вести поиск необходимых в данный момент фрагментов. Работу начинают с того, что небольшую порцию ДНК, составляющую библиотеку (105-106 фагов), разбавляют, смешивая с клетками бактерии-хозяина, и помещают на питательную среду. Бактерии определенное время растут, образуя на питательной среде плотный мутный слой клеток. При этом бактерии, зараженные фагом, растут медленнее, чем неинфицированные клетки. Это приводит к образованию прозрачных кольцевых зон, «бляшек».
Слайд 42Клетки в «бляшке» содержат потомство фагов из первоначальной библиотеки. Образовавшиеся
колонии переносят на нитроцеллюлозные или найлоновые фильтры, накладывая их на
поверхность слоя в чашке, и слегка подогревают. Если теперь инкубировать фильтр с меченым олигонуклеотидным зондом, соответствующим нуклеотидной последовательности целевого фрагмента, произойдет гибридизация зонда с гомологичной последовательностью ДНК.
Слайд 43Место связывания зонда можно определить по радиоактивной или иной метке.
После этого выделяют фаг из положительных (несущих метку) бляшек и
размножают обычным образом. Большие количества необходимого фрагмента получают с помощью расщепления ДНК рестриктазами.