Разделы презентаций


Электрофорез – перемещение заряженных молекул под действием электрического поля

Содержание

z - заряд частицыE - напряженность электрического поля - вязкость средыr - радиус частицы Скорость движения идеализированной сферической частицы в электрическом полеСкорость движения частиц (см/мин) при напряженности электрического поля 1 В/см

Слайды и текст этой презентации

Слайд 1Электрофорез – перемещение заряженных молекул под действием электрического поля к

катоду или аноду в зависимости от знака их суммарного заряда.


Электрофорез – перемещение заряженных молекул под действием электрического поля к катоду или аноду в зависимости от знака

Слайд 2z - заряд частицы
E - напряженность электрического поля
 - вязкость

среды
r - радиус частицы
Скорость движения идеализированной сферической частицы в

электрическом поле

Скорость движения частиц (см/мин) при напряженности электрического поля 1 В/см называется электрофоретической подвижностью. Она имеет размерность см2·мин-1·В-1, а ее знак совпадает со знаком суммарного заряда. Различия в подвижности частиц служит основой для разделения смесей методом электрофореза.

z - заряд частицыE - напряженность электрического поля - вязкость средыr - радиус частицы Скорость движения идеализированной

Слайд 3Классификация электрофоретических методов разделения

По характеру движения зоны
электрофорез с подвижной границей
зональный

электрофорез
стационарный или вытесняющий ЭФ (изотахофорез, изоэлектрофокусирование)

По типу поддерживающей среды
ЭФ в

свободной среде
ЭФ в градиенте плотности
ЭФ в поддерживающих средах с капиллярной структурой
электрофорез на бумаге,
электрофорез на ацетата целлюлозы,
гель-электрофорез (в ПААГ, в агарозном и агаровом геле, в крахмальном геле, в гранулированных гелях)
Классификация электрофоретических методов разделенияПо характеру движения зоныэлектрофорез с подвижной границейзональный электрофорезстационарный или вытесняющий ЭФ (изотахофорез, изоэлектрофокусирование)По типу

Слайд 4Классификация электрофоретических методов разделения

По форме и расположению поддерживающей среды
горизонтальный ЭФ

(в прямоугольных блоках (пластинах), в тонком слое жидкости, во вращающихся

трубках)
ветикальный (в прямоугольных блоках, в трубках)
капиллярный электрофорез.

По количеству направлений миграции
одномерный
двумерный
Классификация электрофоретических методов разделенияПо форме и расположению поддерживающей средыгоризонтальный ЭФ (в прямоугольных блоках (пластинах), в тонком слое

Слайд 5Электрофорез с подвижной границей

Электрофорез с подвижной границей

Слайд 6Электрофорез с подвижной границей

Электрофорез с подвижной границей

Слайд 7Проточный электрофорез в тонком слое жидкости

Проточный электрофорез в тонком слое жидкости

Слайд 8Трубки
Вертикальные пластины
Горизонтальный погружной
Горизонтальный тонкий слой с буферными прокладками

ТрубкиВертикальные  пластины Горизонтальный погружнойГоризонтальный тонкий слой с буферными прокладками

Слайд 9Погружной электрофорез
(Submarine Cell)

Погружной электрофорез(Submarine Cell)

Слайд 10Загрузка образцов в «колодцы». Три различных метода
Горизонтальный электрофорез
Нанесение образцов на

гель с использованием кусочков фильтровальной бумаги (А) и с использованием

аппликатора (Б)

А

Б

Загрузка образцов в «колодцы». Три различных методаГоризонтальный электрофорезНанесение образцов на гель с использованием кусочков фильтровальной бумаги (А)

Слайд 11Вертикальный электрофорез

Вертикальный электрофорез

Слайд 12Вертикальный электрофорез
Формирование карманов и загрузка образцов

Вертикальный электрофорезФормирование карманов и загрузка образцов

Слайд 13Капиллярный электрофорез

Капиллярный электрофорез

Слайд 14Капиллярный электрофорез

Капиллярный электрофорез

Слайд 15Электрофорез в агарозном геле
Формирование агарозного геля. А – заливка горячего

раствора агарозы в форму. Б – установка «гребенки»

Электрофорез в агарозном гелеФормирование агарозного геля. А – заливка горячего раствора агарозы в форму. Б – установка

Слайд 16Полиакриламидный гель
CH2=CH-CONH2
CH2=CH-CO OC-CH=CH2

|

|
NH-CH2-NH

Акриламид

N, N’-метиленбисакриламид

(5-15%)

(2-4%)

(CH3)2N-CH2-CH2-N(CH3)2

ТЕМЕД

(NH4)2S2O8

Персульфат аммония

Полиакриламидный гельCH2=CH-CONH2CH2=CH-CO    OC-CH=CH2        |

Слайд 17Агарозный и полиакриламидный гели
(A) Agarose gels form by noncovalent hydrogen

and hydrophobic bonds between long sugar polymers.
(B) Acrylamide gels

have covalent cross-links (•) between polymer strands.
Агарозный и полиакриламидный гели(A) Agarose gels form by noncovalent hydrogen and hydrophobic bonds between long sugar polymers.

Слайд 18Изменение заряда белка в зависимости от pH
ЭЛЕКТРОФОРЕЗ БЕЛКОВ

Изменение заряда белка в зависимости от pHЭЛЕКТРОФОРЕЗ БЕЛКОВ

Слайд 19Изоэлектрическое фокусирование
Амфолиты должны отвечать следующим требованиям:
отсутствие взаимодействия с белками,
низкая молекулярная

масса,
наименьшее возможное различие между рК и pI,
хорошая электропроводность,
наименьшее возможное

поглощение света в области УФ-поглощения белков,
равномерное распределение зон pI амфолитов,
максимальное количество различных значений рI.
Изоэлектрическое фокусированиеАмфолиты должны отвечать следующим требованиям:отсутствие взаимодействия с белками,низкая молекулярная масса, наименьшее возможное различие между рК и

Слайд 20Immobilized pH gradient polyacrylamide gel matrix showing attached buffering groups

Immobilized pH gradient polyacrylamide gel matrix showing attached buffering groups

Слайд 21Схематическое изображение концентраций ионов в условиях изотахофореза
Ионы системы ИТФ
Изотахофорез
Электрическая подвижность

ионов уменьшается в ряду
UA>UB>UC>UD
После достижения фазы 3 длина и форма

зон больше не меняются
Схематическое изображение концентраций ионов в условиях изотахофорезаИоны системы ИТФИзотахофорезЭлектрическая подвижность ионов уменьшается в рядуUA>UB>UC>UDПосле достижения фазы 3

Слайд 22Диск-электрофорез
А. Начало электрофореза
Б. Белки в концентрирующем геле
В. Белки в процессе

разделения

Диск-электрофорезА. Начало электрофорезаБ. Белки в концентрирующем гелеВ. Белки в процессе разделения

Слайд 23Разделение белков по размера с использованием ДС-Na
За счет гидрофобных взаимодействий

детергент примерно одинаково связывается с подавляющим большинством белков в соотношении

примерно 1,4 мг ДС-Na на мг белка
Разделение белков по размера с использованием ДС-NaЗа счет гидрофобных взаимодействий детергент примерно одинаково связывается с подавляющим большинством

Слайд 24Электрофорез в градиенте пористости ПААГ

Электрофорез в градиенте пористости ПААГ

Слайд 25Иммуноэлектрофорез (а) очищенного плазменного альбумина (b) IgG. Каждая проба шла

вместе с цельной плазмой для сравнения.
Ракетный электрофорез фактора комплемета C3.
Перекрестныный

ИЭФ-иммуноэлектрофорез плазмы крови человека.

Иммуноэлектрофорез

Иммуноэлектрофорез (а) очищенного плазменного альбумина (b) IgG. Каждая проба шла вместе с цельной плазмой для сравнения.Ракетный электрофорез

Слайд 26Двумерный электрофорез

Двумерный электрофорез

Слайд 27Двумерный электрофорез

Двумерный электрофорез

Слайд 28Обнаружение белков на электрофореграммах

Обнаружение белков на электрофореграммах

Слайд 29ЭЛЕКТРОФОРЕЗ НУКЛЕИНОВЫХ КИСЛОТ

ЭЛЕКТРОФОРЕЗ НУКЛЕИНОВЫХ КИСЛОТ

Слайд 30Поведение разных форм НК в геле
Поведение нуклеиновых кислот в геле

сильно зависит от их вторичной структуры:

1. Однонитевые и двунитевые молекулы.

В поведении однонитевых (РНК, денатурированная ДНК) и двунитевых молекул НК многое определяется их размерами. В случае коротких полинуклеотидных цепей нативная двунитевая молекула имеет более жесткую структуру, чем таких же размеров однонитевая. Она труднее изгибается, проходя через пространственную сетку геля. В силу этого, например, относительно короткие двунитевые фрагменты ДНК при близких к нейтральному значениях рН будут отставать при электрофорезе в ПААГ от денатурированных ДНК такой же длины. Однако для более крупных молекул ситуация может измениться на противоположную. Длинная двунитевая цепочка оказывается уже в целом довольно гибкой: она продвигается через поры геля, как бы «извиваясь ужом». Между тем однонитевая цепь той же длины сворачивается в «хаотический клубок» такого размера, что его продвижение в геле оказывается более затрудненным. В этом случае денатурированная ДНК при электрофорезе отстает от нативной. Естественно, что граница обращения описанного эффекта зависит от размера пор геля.
Поведение разных форм НК в гелеПоведение нуклеиновых кислот в геле сильно зависит от их вторичной структуры:1. Однонитевые

Слайд 31Поведение разных форм НК в геле
2. Кольцевые ДНК. Двунитевые ДНК

форм I, II и III. Вирусные и митохондриальные двунитевые ДНК,

а также плазмиды бактерий могут иметь структуру замкнутого двунитевого кольца. Нативное состояние такого кольца - «сверхскрученное». Кольцо в целом сворачивается в «жгут», что сильно увеличивает его компактность (форма I). Если же хотя бы в одной из двух нитей кольца имеется единичный разрыв сахарофосфатной цепи, то «жгут» разворачивается и силами электростатического отталкивания фосфатных групп кольцо расправляется. Компактность молекулы становится меньше, наружные размеры увеличиваются (форма II). Форма I при электрофорезе всегда мигрирует быстрее, чем форма II. Что касается линейной двунитевой молекулы ДНК (форма III), то она может мигрировать быстрее или медленнее, чем сверхскрученное кольцо одинаковой с ней молекулярной массы, в зависимости от среднего размера пор геля. Для крупнопористого геля решающим фактором может оказаться компактность формы I, для мелких пор на первый план выступает большая гибкость линейной молекулы.
Поведение разных форм НК в геле2. Кольцевые ДНК. Двунитевые ДНК форм I, II и III. Вирусные и

Слайд 32Скорость миграции линейных двунитевых молекул ДНК уменьшается с увеличением их

молекулярной массы, но лишь до определенного предела. При молекулярной массе

более 5 млнв 1,6 %-ном геле агарозы и более 12 млн. в 0,8 %-ном линейные молекулы ДНК мигрируют с одинаковой скоростью независимо от их молекулярной массы (!) и, следовательно, не могут быть разделены электрофорезом. Это происходит именно вследствие гибкости длинных молекул ДНК. Их противоположные концы мигрируют в электрическом поле независимо друг от друга, и вся молекула, извиваясь, проходит через гель одинаково легко (или одинаково трудно) при любой ее длине.
Скорость миграции линейных двунитевых молекул ДНК уменьшается с увеличением их молекулярной массы, но лишь до определенного предела.

Слайд 33Электрофорез в пульсирующем электрическом поле (пульсфорез)

Электрофорез в пульсирующем электрическом поле (пульсфорез)

Слайд 34Two different fields are applied, using the HEX electrode. The

figures show isofield lines. (a) North/South field (b) East/West field.
Two

different fields are applied using the point electrodes (DI configuration).
The figures show isofield lines. (a) North/South field (b) East/West field
Two different fields are applied, using the HEX electrode. The figures show isofield lines. (a) North/South field

Слайд 35Обнаружение НК на электрофореграммах
Ethidium bromide
Ethidium bromide is a powerful mutagen

and moderately toxic. Gloves should be worn when working with

solutions that contain this dye.

Бромистый этидий

Обнаружение НК на электрофореграммахEthidium bromideEthidium bromide is a powerful mutagen and moderately toxic. Gloves should be worn

Слайд 36Бромфеноловый синий
Ксиленцианол
Лидирующие красители

Бромфеноловый синийКсиленцианол Лидирующие красители

Слайд 37Маркерные молекулы
1. Рестрицированные природные ДНК
2. DNA laddrs & rullers

Маркерные молекулы1. Рестрицированные природные ДНК2. DNA laddrs & rullers

Слайд 38Источники питания
PS2A200 Power supply is a high current power supply

ideal for all types of electrophoresis blotting and short electrophoresis

runs.

200 V, 2000 mA, 200 W maximum.
Constant voltage, constant current, or constant power modes.
4 timer options to choose from: continuous run, set time run, set time run followed by a hold at 5 V, or set Volt-hour run.
Single unit increments in settings and read-outs for precision and reproducibility.
Print log of run parameters via RS-232 port.
Designed for high current applications such as tank blotting.
Stores and recalls three protocols.
Источники питанияPS2A200 Power supply is a high current power supply ideal for all types of electrophoresis blotting

Слайд 39Разделение плазмы крови человека и маркерных белков DISC-электрофорезом в трубках
Разделение

белков с SDS по Лэммли
Анализ животной плазмы крови электрофорезом в

градиенте пористости полиакриламида 4/30

Двумерный электрофорез гомогената E. coli. Pharmalyte 3-10 – SDS PAGE

Разделение плазмы крови человека и маркерных белков DISC-электрофорезом в трубкахРазделение белков с SDS по ЛэммлиАнализ животной плазмы

Слайд 405–20% acrylamide gradient gel. 0.75-
mm-thick SDS gel was separated overnight

at 4 mA and stained with Coomassie Blue. Outside lanes

contain protein standards with their sizes listed in kilodaltons
5–20% acrylamide gradient gel. 0.75-mm-thick SDS gel was separated overnight at 4 mA and stained with Coomassie

Обратная связь

Если не удалось найти и скачать доклад-презентацию, Вы можете заказать его на нашем сайте. Мы постараемся найти нужный Вам материал и отправим по электронной почте. Не стесняйтесь обращаться к нам, если у вас возникли вопросы или пожелания:

Email: Нажмите что бы посмотреть 

Что такое TheSlide.ru?

Это сайт презентации, докладов, проектов в PowerPoint. Здесь удобно  хранить и делиться своими презентациями с другими пользователями.


Для правообладателей

Яндекс.Метрика