Разделы презентаций


Получение продуцентов с помощью генной инженерии

Содержание

Генная инженерия, или техника рекомбинантных ДНК, - это совокупность приемов, позволяющих in vitro перенести генетический материал из одного организма (источника генов) в другой (реципиент) так, чтобы обеспечить наследование этих генов в новом для

Слайды и текст этой презентации

Слайд 1 Получение продуцентов с помощью генной инженерии

Получение продуцентов с помощью генной инженерии

Слайд 2Генная инженерия, или техника рекомбинантных ДНК, - это совокупность приемов,

позволяющих in vitro перенести генетический материал из одного организма (источника генов) в

другой (реципиент) так, чтобы обеспечить наследование этих генов в новом для них организме.
Одной из главных задач генной инженерии является получение организмов с желаемыми свойствами.

1. Сущность и задачи генной инженерии.

Генная инженерия, или техника рекомбинантных ДНК, - это совокупность приемов, позволяющих in vitro перенести генетический материал из одного организма

Слайд 3Методами генной инженерии возможно преодолевать межвидовые барьеры, то есть переносить

гены  и передавать отдельные наследственные признаки одних организмов другим (напр., от

человека или животного - бактериям, растениям и др.). Генетически модифицированные микроорганизмы (трансгенные или рекомбинантные), обладающие сверхпродукцией получены для производства инсулина, соматотропина, интерферона и многих других белков.

1. Сущность и задачи генной инженерии.

Методами генной инженерии возможно преодолевать межвидовые барьеры, то есть переносить гены  и передавать отдельные наследственные признаки одних организмов

Слайд 4I выделение нужного (целевого) гена;
II встраивание гена в генетический

элемент, способный к репликации (вектор);
III введение вектора в организм-реципиент;


VI идентификация (скрининг) и отбор клеток, которые приобрели желаемый ген или гены.
I Выделение нужного (целевого) гена
– один из главных этапов в генетической инженерии. Существует два основных способа получения гена: синтез и выделение из ДНК.

2. Этапы получения генетически модифицированных микр–продуцентов

I выделение нужного (целевого) гена; II встраивание гена в генетический элемент, способный к репликации (вектор); III введение

Слайд 5Схема основных этапов генетической инженерии

Схема основных этапов генетической инженерии

Слайд 6А. Химико-ферментативный синтез генов применяют наиболее часто.
Химическим путем синтез олигонуклеотиды

или праймеры (короткие одноцепочечные фрагменты ДНК - 8-16 нуклеотидов), а

гены синтезируют ферментативным методом с помощью ПЦР.

Ι.1)Синтез гена осуществляется 2-мя путями

А. Химико-ферментативный синтез генов применяют наиболее часто.Химическим путем синтез олигонуклеотиды или праймеры (короткие одноцепочечные фрагменты ДНК -

Слайд 7
Б. Синтез генов с помощью обратной транскрипции на мРНК.


Выделяют мРНК соответствующего гена из полирибосом и используют ее в

качестве матрицы для фермента ревертазы.
Метод основан на универсальной способности обратных транскриптаз синтезировать двунитевую ДНК (кДНК) на однонитевых РНК-матрицах.

Ι.1)Синтез гена осуществляется 2-мя путями

Б. Синтез генов с помощью обратной транскрипции на мРНК. Выделяют мРНК соответствующего гена из полирибосом и

Слайд 8
Гены также могут быть получены из уже созданных геномных

библиотек, которые представляют собой совокупность фрагментов геномной ДНК какого-либо организма

или из библиотек кДНК.


Ι.1)Синтез гена осуществляется 2-мя путями

Гены также могут быть получены из уже созданных геномных библиотек, которые представляют собой совокупность фрагментов геномной

Слайд 9
Необходимо точно знать расположение гена и вырезать его при

помощи рестриктаз. Каждая из рестриктаз узнает свой сайт рестрикции и

разрезает ДНК либо внутри сайта, либо в непосредственной близости от него.

Ι. 2) Выделение гена из ДНК клетки с нужными свойствами.

Необходимо точно знать расположение гена и вырезать его при помощи рестриктаз. Каждая из рестриктаз узнает свой

Слайд 10Выделенный или синтезированный ген не может самостоятельно встраиваться в ДНК

клетки-мишени и тем более начинать функционировать. Для переноса целевого гена

создают специальную конструкцию - вектор, несущий полученный ген и способный встраиваться в геном клетки.

II Встраивание гена в генетический элемент, способный к репликации (вектор).

Выделенный или синтезированный ген не может самостоятельно встраиваться в ДНК клетки-мишени и тем более начинать функционировать. Для

Слайд 11 вектор должен быть небольшим и содержать сайты рестрикции для

нескольких рестриктаз, должен обладать определенной емкостью;
вектор должен иметь точку

начала репликации (ori), т.е. автономно реплицироваться, накапливаться в многочисленных копиях в клетке хозяина и сохраняться в дочерних клетках при делении материнской;

II 1. Требования к генетическим векторам:

вектор должен быть небольшим и содержать сайты рестрикции для нескольких рестриктаз, должен обладать определенной емкостью; вектор

Слайд 12иметь функциональный ген промотор (прокариотический или эукариотический), способный экспрессироваться в

клетке;
- должен иметь маркерный ген, позволяющий различать гибридные клетки для

эффективной селекции;
- должен быть способным передаваться в клетку соответствующего организма.

II 1. Требования к генетическим векторам:

иметь функциональный ген промотор (прокариотический или эукариотический), способный экспрессироваться в клетке;- должен иметь маркерный ген, позволяющий различать

Слайд 14Генетическая карта плазмиды pBR322.
Одна из наиболее часто употребляемых плазмид для

клонирования. pBR322 создана на основе плазмид природного происхождения, выде- ленных

из E. coli. Эта плазмида несет гены устойчивости к двум антибиотикам: ампициллину (ген amp) и тетрациклину (ген tet), а также уникальные сайты для BamHI, Hind III и Sal I в генеТеt
Генетическая карта плазмиды pBR322.Одна из наиболее часто употребляемых плазмид для клонирования. pBR322 создана на основе плазмид природного

Слайд 15Маркерные гены флуоресценции у генномодифицированного растения

Маркерные гены флуоресценции у генномодифицированного растения

Слайд 16Маркерные гены флуоресценции у генномодифицированных мышей

Маркерные гены флуоресценции у генномодифицированных мышей

Слайд 17В качестве прокариотических векторов чаще используют плазмиды бактерий, бактериофаги.
Плазмиды

бактерий способны реплицироваться независимо от хромосомы это их главное свойство.

Плазмиды могут быть выделены из клетки и использованы в неповрежденном, нативном состоянии. В векторной плазмиде E.coli pBR322 есть маркерные гены устойчивости к ампициллину и к тетрациклину.

II 2. Характеристика векторов для переноса генетической информации в прокариотические клетки.

В качестве прокариотических векторов чаще используют плазмиды бактерий, бактериофаги. Плазмиды бактерий способны реплицироваться независимо от хромосомы это

Слайд 18Бактериальные клетки, содержащие такой вектор, устойчивы одновременно к ампициллину и

тетрациклину. Плазмидные векторы удобны для клонирования небольших фрагментов (до 10

тыс. пар оснований) геномов, т.е. плазмидные векторы обладают небольшой емкостью.

II 2. Характеристика векторов для переноса генетической информации в прокариотические клетки.

Бактериальные клетки, содержащие такой вектор, устойчивы одновременно к ампициллину и тетрациклину. Плазмидные векторы удобны для клонирования небольших

Слайд 19Бактериофаги – вирусы бактерий способны встраиваться в геном клетки хозяина

(вызывать лизогенизацию).
Бактериофаги широко распространены в природе — их выделяют

из воды, почвы, организмов различных животных и человека. Большинство фагов ДНК-содержащие вирусы, имеют смешанный тип симметрии капсида. Широко используют векторы на основе бактериофагов E.coli - λ и М13.

II 2. Характеристика векторов для переноса генетической информации в прокариотические клетки.

Бактериофаги – вирусы бактерий способны встраиваться в геном клетки хозяина (вызывать лизогенизацию). Бактериофаги широко распространены в природе

Слайд 20Из ДНК фага удаляют области, не существенные для репликации в

клетках E.coli, и оставляют сайты, предназначенные для проникновения и встраивания

фага в геном клетки хозяина (фаговый вектор должен проникнуть в клетку и встроиться в геном). В эту же область встраивают целевой и маркерные гены. На основе бактериофага λ можно сконструировать векторы емкостью до 25 т.п.н.

II 2. Характеристика векторов для переноса генетической информации в прокариотические клетки.

Из ДНК фага удаляют области, не существенные для репликации в клетках E.coli, и оставляют сайты, предназначенные для

Слайд 21Схема создания векторной конструкции использованием фага

Схема создания векторной конструкции использованием фага

Слайд 22В качестве эукариотических векторов используют вирусы животных и растений, Ti

плазмиды агробактерий (Agrobakterium tumefaciens), а также искусственно сконструированные векторы, способные

реплицироваться как в бактериальных, так и в эукариотических клетках (челночные векторы).

II 3. Характеристика векторов для переноса генетической информации в эукариотические клетки.

В качестве эукариотических векторов используют вирусы животных и растений, Ti плазмиды агробактерий (Agrobakterium tumefaciens), а также искусственно

Слайд 23Очищенную кольцевую плазмиду E.coli pBR322 обрабатывают ферментом рестриктазой BamH1, которая

специфически разрезает плазмиду в единственном сайте, расположенном в гене устойчивости

к тетрациклину, так что образуется линейная молекула с липкими концами. Такие молекулы смешивают с подготовленным участком ДНК (с нужным геном), содержащим комплементарные липкие концы.

II 4. Создание генетической конструкции.

Очищенную кольцевую плазмиду E.coli pBR322 обрабатывают ферментом рестриктазой BamH1, которая специфически разрезает плазмиду в единственном сайте, расположенном

Слайд 24Некоторые рестриктазы и расщепляемые ими последовательности.

Некоторые рестриктазы и расщепляемые ими последовательности.

Слайд 25а) схема действия фермента рестриктазы EcoRI на двухцеп мол ДНК,

с указанием участка распознавания и места разреза;
б) фрагменты ДНК

с липкими концами после разрезания ферментом EcoRI. Возможно расщ-е ДНК со сдвигом, при этом одна из нитей выступает на несколько нуклеотидов. «Липкие» концы в силу своей комплементарности вступают во взаимодействие.

Выделение генов из ДНК проводят с помощью рестриктаз

а) схема действия фермента рестриктазы EcoRI на двухцеп мол ДНК, с указанием участка распознавания и места разреза;

Слайд 26Схема получения рекомбинантной ДНК по Коену -Бойеру

Схема получения рекомбинантной ДНК по Коену -Бойеру

Слайд 27Поскольку липкие концы этих двух ДНК взаимно комплементарны, они спариваются

с образованием гибридных молекул. Далее смесь обрабатывают ДНК-лигазой для сшивания

комплементарных концов нужного гена и вектора.

II 4. Создание генетической конструкции.

Поскольку липкие концы этих двух ДНК взаимно комплементарны, они спариваются с образованием гибридных молекул. Далее смесь обрабатывают

Слайд 28При включении фрагментов ДНК в участок гена резистентности к тетрациклину,

устойчивость к тетрациклину из-за этой вставки нарушается, и все рекомбинантные

плазмиды сохраняют устойчивость только к ампициллину.
Таким образом, высевая клетки на среды с антибиотиками, можно отобрать клоны, содержащие рекомбинантные молекулы ДНК.

II 4. Создание генетической конструкции.

При включении фрагментов ДНК в участок гена резистентности к тетрациклину, устойчивость к тетрациклину из-за этой вставки нарушается,

Слайд 29Генетическая карта плазмиды pBR322.
Одна из наиболее часто употребляемых плазмид для

клонирования. pBR322 создана на основе плазмид природного происхождения, выде- ленных

из E. coli. Эта плазмида несет гены устойчивости к двум антибиотикам: ампициллину (ген amp) и тетрациклину (ген tet), а также уникальные сайты для BamHI, Hind III и Sal I в генеТеt
Генетическая карта плазмиды pBR322.Одна из наиболее часто употребляемых плазмид для клонирования. pBR322 создана на основе плазмид природного

Слайд 30Введение гена в плазмиду
E. coli и клонирование
рекомбинантной ДНК в

клетках.

Введение гена в плазмиду E. coli и клонированиерекомбинантной ДНК в клетках.

Слайд 31Для того чтобы рекомбинантная ДНК стала составной частью генетического аппарата

клетки, она должна либо встроиться в ее ге­ном (интегрироваться в

хромосому) и реплицироваться за ее счет (как лизогенные бактериофаги), либо быть способной к автономной репликации (как плазмиды).

III Введение вектора в организм-реципиент.

Для того чтобы рекомбинантная ДНК стала составной частью генетического аппарата клетки, она должна либо встроиться в ее

Слайд 32 Для введения вектора делают клетки компетентными путем обработки хлористым кальцием,

полиэтиленгликолем, тепловым ударом или лизоцимом, после чего добавляют к ним

векторные конструкции.
Векторы в бактериальные, грибные, растительные или животные клетки вводят разными путями, в том числе естественными способами, которые широко распространены природе:

III Введение вектора в организм-реципиент.

Для введения вектора делают клетки компетентными путем обработки хлористым кальцием, полиэтиленгликолем, тепловым ударом или лизоцимом, после чего

Слайд 33В эту же область встраивают маркерные гены, для отличия рекомбинантной

ДНК от исходного вектора. Ёмкость бактериофага λ до 25 т.п.н.


III Введение вектора в организм-реципиент.
Для того чтобы рекомбинантная ДНК стала составной частью генетичес кого аппарата клетки, она должна либо встроиться в ее геном (интегрироваться в хромосому) и реплицироваться за ее счет (как лизогенные бактериофаги), либо быть способной к автономной репликации (как плазмиды).
В эту же область встраивают маркерные гены, для отличия рекомбинантной ДНК от исходного вектора. Ёмкость бактериофага λ

Слайд 34а) конъюгация – генетический материал клеток при сближении переходит из

одной клетки в другую в виде плазмиды;
б) трансдукция – передача

клетке генетического материала через вирус (эукариотических клеток) или фаг;
в) трансформация – это проникновение фрагментов нативной ДНК через оболочку клетки.

III Введение вектора в организм-реципиент.

а) конъюгация – генетический материал клеток при сближении переходит из одной клетки в другую в виде плазмиды;б)

Слайд 36осуществляют уже после клонирования в клетках E. coli.
Сначала клетки

после трансформации высевают на питательную среду, содержащую ампициллин, так как

трансформированные и нетрансформированные клетки устойчивы к ампициллину (это позволяет выявить клетки как с «пустым» вектором, так и со «вставкой»).

VI Идентификацию (скрининг) и отбор клеток, которые приобрели желаемый ген или гены

осуществляют уже после клонирования в клетках E. coli. Сначала клетки после трансформации высевают на питательную среду, содержащую

Слайд 37На втором этапе проводят разделение этих двух вариантов. Клетки, выросшие

на среде с ампициллином, переносят на среду с тетрациклином методом

перепечатки (делают пересев с точным расположением колоний на среде).
Клетки, несущие гибридную плазмиду, устойчивы к ампициллину, но чувствительны к тетрациклину, поэтому не будут расти на среде с тетрациклином.

VI Идентификацию (скрининг) и отбор клеток, которые приобрели желаемый ген или гены

На втором этапе проводят разделение этих двух вариантов. Клетки, выросшие на среде с ампициллином, переносят на среду

Слайд 38Сначала клетки после трансформации высевают на питательную среду, содержащую ампициллин.

В таких условиях могут вырасти только те клетки, в которых

присутствует интактный ген bla - или в составе интактной плазмиды pBR322, или в составе гибридной плазмиды; нетрансформированные клетки чувствительны к ампициллину. Сайт BamHI расположен в гене tet плазмиды pBR322, встраивание в этот ген фрагмента ДНК прерывает кодирующую последовательность, и устойчивость к тетрациклину утрачивается. Т. о., кл, несущие гибридную плазмиду, устойч к ампициллину, но чувствительны к тетрациклину, а клетки, получившие интактную плазмиду pBR322, несут ген tet и устойчивы как к ампициллину, так и к тетрациклину. На втором этапе проводят разделение этих двух вариантов. Клетки, выросшие на среде с ампициллином, переносят на среду с тетрациклином методом перепечатки.

Идентификация и отбор клеток, которые приобрели нужный ген

Сначала клетки после трансформации высевают на питательную среду, содержащую ампициллин. В таких условиях могут вырасти только те

Слайд 39Ti-плазмиды (Tumor inducing� – индукция новообразований) агробактерии, которая в естественных

условиях вызывает у растений образование опухолей (корончатых галлов) в местах

проникновения бактерии

корончатый галл

Галлообразование на морковном ломтике привитом Agrobacterium tumefaciens.

Agrobacterium tumefaciens

Ti-плазмиды (Tumor inducing� – индукция новообразований) агробактерии, которая в естественных условиях вызывает у растений образование опухолей (корончатых

Слайд 40Генетическая колонизация растения 
 Agrobacterium tumefaciens 
1- агробактерии существуют в ризосфере;
2 - строение

A. tumefaciens; 3 – встраивание Т-ДНК в геном; 4 –

образование опухоли
Генетическая колонизация растения  Agrobacterium tumefaciens 1- агробактерии существуют в ризосфере; 2 - строение A. tumefaciens; 3 – встраивание Т-ДНК в

Слайд 41В состав Тi-плазмиды входят участок, встраивающийся в геном растения (Т-ДНК-

область), гены �vir-области, обеспечивающие перенос Т-ДНК в растительный геном, а

также гены синтеза

фитогормонов (ауксинов и цито-кининов) и опинов (производных аминокислот).

http://www.biotechnolog.ru/ge/ge12_4_2.png

В состав Тi-плазмиды входят участок, встраивающийся в геном растения (Т-ДНК- область), гены �vir-области, обеспечивающие перенос Т-ДНК в

Слайд 42Т. о., кроме Т-ДНК в плазмидах имеются область, кодирующая функцию

конъюгации (Tra), область репликации (Ori V) и область вирулентности (Vir).


Важно отметить, что все гены, ответственные за перенос и интеграцию генов Т-области, находятся не в ней самой, а рядом — в области вирулентности—vir-области.
Т-области ограничены прямыми повторяющи- мися последовательностями по 24—25 п. н., и любая ДНК, вставленная между этими повторами, будет принята за Т-область и перенесена в растительную клетку.
Т. о., кроме Т-ДНК в плазмидах имеются область, кодирующая функцию конъюгации (Tra), область репликации (Ori V) и

Слайд 43Создание коинтегративного вектора на основе Тi-плазмиды:
Рр - расщепление рестриктазой
В

результате этого Т-ДНК со встроенным геном включается в нативную
Ti-плазмиду,

замещая нормальную ДНК. Получаются клетки А. tumefaciens, несущие Ti-плазмиды со встроенными в Т-сегмент нужными генами. Далее их перенос в кл растения осуществляется обычным способом, характерным для агробактерий.
Создание коинтегративного вектора на основе Тi-плазмиды: Рр - расщепление рестриктазойВ результате этого Т-ДНК со встроенным геном включается

Обратная связь

Если не удалось найти и скачать доклад-презентацию, Вы можете заказать его на нашем сайте. Мы постараемся найти нужный Вам материал и отправим по электронной почте. Не стесняйтесь обращаться к нам, если у вас возникли вопросы или пожелания:

Email: Нажмите что бы посмотреть 

Что такое TheSlide.ru?

Это сайт презентации, докладов, проектов в PowerPoint. Здесь удобно  хранить и делиться своими презентациями с другими пользователями.


Для правообладателей

Яндекс.Метрика