Тульский государственный университет Медицинский институт Лечебный факультет

в отечественной литературе лишь в 1983 г., когда были описаны

двое больных. В предыдущие годы в зарубежной печати появлялись сообщения о выделении кампилобактеров от больных с «диареями путешественников», возвратившихся из поездок по Советскому Союзу и заразившихся во время поездок. Так, A.Pönkä et al. С июля 1978 г. По июнь 1981 г. выявили кампилобактериоз у 63 человек из 524 заболевших ОКЗ, посещавших в качестве туристов СССР и заразившихся во время поездок. Случаи заболеваний КИ туристов, прибывших из СССР, отмечались и в других зарубежных. В настоящее время проблемами кампилобактериоза занимается большинство научно-исследовательских институтов эпидемиологического и микробиологического профиля.

человека
Первоначально кампилобактеры были отнесены к семейству Vibrionaceae но морфологически они

значительно отличаются от вибрионов. В 1963 г. Был выделен новый род Campilobacter семейства Spirillaceae. Он включал в себя Vibrio fetus и родственные ему микроорганизмы . В соответствии с современной классификацией род Campilobacter состоит из двух десятков видов и подвидов бактерий, обнаруженных как у человека, так и животных и птиц. Перечень видов постоянно пополняется новыми, и систематика кампилобактеров, приведенная в последней редакции «Руководства по систематической бактериологии» уже является неполной. Поэтому для повседневной бактериологической практики более удобная рабочая классификация кампилобактеров.

C. fetus .
Первые три из них – термофилы (оптимальная

температура их роста – 42 оС), они обычно являются этиологическими агентами диарейных заболеваний. Рядом исследователей доказана также роль термофильных кампилобактеров в возникновении септицемии, менингитов, тромбофлебитов, холециститов, поражения почек и мочевыводящих путей, сердца, легких, печени, нервной системы (полиневриты, парезы, параличи), опорно-двигательного аппарата (артриты, синовииты, бурситы и т.п.). Мезофильный вид кампилобактеров - C. fetus, культивируемый при умеренной температуре инкубации (25-37 оС), вызывает, в основном, септические и септико-пиемические формы КИ, в особенности у пожилых и ослабленных людей, страдающих различными хроническими заболеваниями, а также у лиц с иммунодефицитными.

значимости перечисленных видов кампилобактеров в инфекционной патологии человека. Одновременно отмечается

интенсивная циркуляция ранее редко встречающихся видов среди животных и птиц и в ООС. Так, при обследовании персонала Алма-Атинской птицефабрики были выявлены случаи здорового носительства персоналом C. hyointestinalis, идентичных штаммам, выделенным от кур птицефабрики. Помимо этого, из вод открытых водоемов выделяются штаммы C. cryaerophila, что свидетельствует о массивном загрязнении этих вод отбросами животного происхождения.

значительно чаще, чем другие виды. Исключение составляют дикие птицы, у

которых были обнаружены только C. coli и C. laridis. Штаммы C. laridis были обнаружены также у людей, больных КИ и из воды открытых водоемов, однако у кур данный вид кампилобактеров ни в одном случае обнаружен не был. Приблизительно каждый четвертый штамм ТК, выделенный от людей, принадлежал к виду C. coli. Его резервуаром оказались как домашние, так и экзотические животные и сельскохозяйственные птицы (куры, цесарки).

C.pylori, ассоциирующийся с эрозивно-язвенными поражениями желудка и 12-перстной кишки. Изучение

биологических свойств этого микроорганизма и его роли в патогенезе упомянутых процессов позволило существенно уточнить и пересмотреть существующие представления об этиопатогенезе гастритов и язвенной болезни. Однако тщательное изучение фено-и генотипических характеристик представителей C.pylori показало, что более оправданным является выделение их в отдельный род Helicobacter, в составе которого они и рассматриваются в настоящее время.

представителей рода Campilobacter, требующих выделения новых самостоятельных видов и подвидов

бактерий, предстоят дополнительные изменения в систематике этого рода

включении в него рода Campilobacter, Arcobacter, Helicobacter, Wolinella, Flexispira.
Для родов

Campilobacter и Arcobacter, образующих генотипически и фенотипически отдельную группу предпочтительнее название Campilobacteriaceae.
Таким образом, род Campilobacter включает в себя довольно разнообразную группу бактерий, играющих весьма значительную роль в патологии человека и животных.

не являются патогномоничными для данной инфекции, поэтому на основании одних

симптомов практически невозможно отличить КИ от диарейных заболеваний, обусловленных другими энтеропатогенными микроорганизмами.
Основными симптомами КИ являются лихорадка, частый жидкий стул с примесью крови на 1-3 сутки болезни, боли в животе, которые появляются за 1 сутки до диареи и сохраняются 5-7 дней после нормализации стула. Выздоровление наступает через 7-12 дней, иногда наблюдаются рецидивы у детей через 2-3 недели, у взрослых рецидивы отмечаются исключительно редко.

тот факт, что нередко кампилобактер выделяется от больного не как

единственный этиологический агент, а в составе «микст-инфекции».
«Микст-инфекции», обусловленные кампилобактерами вместе с другими бактериальными, вирусными или протозойными патогенами, встречаются довольно часто, особенно в развивающихся странах. Так в Индии более чем в 60 % случаев кампилобактеры от больных ОКЗ выделяются в составе «микст-инфекции».

различных формах кампилобактериоза, показал, что штаммы, выделенные от бессимптомных носителей,

отличаются высокой резистентностью к антибиотикам различных классов. Штаммы, выделенные от бессимптомных носителей, характеризовались высокой резистентностью к оксампу, амикацину и чувствительностью к эритромицину и ципрофлоксацину. Среди штаммов, выделенных от тяжелобольных кампилобактериозом, резистентные штаммы как правило не обнаруживаются.

и представителей различных биологических дисциплин. Этот интерес обусловлен двумя основными

причинами. Первая экологическая особенность развития листерий, пластичность метаболизма, благодаря чему бактерии живут и размножаются в широком диапазоне природных условий. Вторая причина связана с изучением механизма клеточного иммунитета, так как листерии являются внутриклеточными паразитами, преимущественно локализующимися в Т-лимфоцитах.

клиницистов различных специальностей.
Среди причин следует отметить:
- повсеместное распространение и растущую

заболеваемость листериозом во всем мире;
- выраженный полиморфизм клинических проявлений и высокий процент летальных исходов;
- своеобразный патогенез листериозной инфекции;
- трудности в создании систем типирования с целью выявления и дифференциации эпидемиологически значимых опасных для человека штаммов L. monocytogenes.

Сэун составили подробное описание микроорганизма, названного ими Бактер «моноцитогенес», Д.

Пири в 1927 г. описал его под названием Листерелла гепатолитика, взгляды на таксономию претерпели существенную эволюцию.
И хотя вопросы систематики и таксономии постоянно изучались как отечественными, так и зарубежными учеными, но вопросов было больше, чем ответов. До последнего времени неясным было понимание места листерий среди других микроорганизмов, а также внутри вида Listeria

помещен в семейство коринебактерий вместе с лактобактериями, родами бронхотрикс и

эризипилотрикс. Последние способны вызывать рожу у свиней. И по мнению ряда исследователей (Г.Зеелигер, 1997; И.А.Бакулов, 1976, 1983, 1988; Д.Рокоурт, 1983, 1987) очень близки к листериям. В 8-м издании Берджи оба эти рода были вынесены из семейства коринебактерий и определены как роды с неясным систематическим положением семейства Lactobacillaceae. В 9-м издании определителя род Listeria отнесен к 19-й группе микроорганизмов – грамположительные не спорообразующие палочки правильной формы.

качестве одного из критериев установления геномного родства, а также для

выяснения таксономического положения многих групп бактерий. Однако возможность применения этого метода в качестве единственного таксономического критерия весьма ограничена, так как ДНК двух биологически не родственных организмов могут иметь одинаковый молекулярный процент (гуанин-цитозина мол. % ГЦ). По мнению многих авторов, генеалогические связи прокариот могут быть установлены при использовании данных о последовательности нуклеотидов 16Sр РНК.

и близких к ним микроорганизмов показали, что листерии филогенетически наиболее

близки к факультативно аэробному роду Bronchotrix и к факультативно анаэробным родам Kurthia, Gemella и Eryspelothix. Это сходство значительно затрудняло постановку бактериологического диагноза. Вопрос внутривидовой систематики до последнего времени также оставался неясным. До 1961 г. род Listeria был представлен одним видом – L. monocytogenes. Затем в него вошли L. denitrificans (1961), L.grayi (1966), L. murrey (1971). Все штаммы серовара 5 обладали ярко выраженным гемолизом и были выделены болгарским исследователем Ивановым в 1975 г. в отдельный вид L. bulgarica. В 1984г. этот вид был переименован в L. ivanovi. Новый вид L. inocua объединил непатогенные штаммы L. monocytogenes, относившиеся к 6 серовару. В 1983 г. в род листерий вошли еще два вида: L. Welchimeri и L.seeligeri.

НК и 16Sр РНК сократило количество видов листерий до 6.
В

самостоятельный род Jonesia была выделена L. denitrificanes. Вид L. murray стали рассматривать как подвид L. Gray. Из шести известных в настоящее время видов листерий только L. monocytogenes патогенен для человека, а L. ivanovi – для животных.
Но диагностика листериоза в значительной мере затруднена из-за отсутствия быстрых и чувствительных методов идентификации патогенных листерий, чувствительных методов индикации патогенных и непатогенных штаммов листерий. В последние годы в диагностике и эпизоотологии, а также при исследовании патогенеза листериоза широко применяют современные методы молекулярной биологии и иммунологии.

при исследовании листерий, содержащих набор плазмид.
Рестрикционный анализ хромосомной ДНК. Количество

и размер фрагментов ДНК отражает частоту и распределение сайтов рестрикции и часто используется для анализа генома листерий. В последнее время широко применяют гель-электрофорез хромосомальной ДНК в пульсирующем электрическом поле, который имеет более высокую разрешающую способность, чем обычные методы.

комплементарные различным последовательностям ДНК листерий.
Риботипирование позволяет с помощью блот-гибридизации обнаружить

полиморфизм рибосомальных оперонов различных видов листерий.
Полимеразная цепная реакция (ПЦР) оказалась особенно полезной для обнаружения и дифференциации патогенных листерий. Основное преимущество ПЦР - это высокая чувствительность и быстрота получения результата. Для проведения филогенетического анализа и изучения эволюции патогенных листерий используется несколько различных вариантов ПЦР.

патогенных и непатогенных листерий секвенированием сходных локусов каждого из них.

Этот подход уже широко используется в исследованиях по эволюции, в анализе естественных изменений и разновидностей внутри рода листерий и обеспечивает высоконадежные и объективные данные при проведении эпизоотологических исследований.
Данные методы ни в коей мере не исключают классические методы диагностики, а дополняют их для постановки быстрого и точного диагноза.

изоляты листерий происходят от одного предшественника, следовательно, имеют общие характеристики,

которые позволяют отличать их от других полевых изолятов. Поэтому использование специфических характеристик для типирования патогенных штаммов и изолятов листерий прежде всего связано с их внутриштаммовой стабильностью и их многообразием внутри вида. Последний является отражением генетической эволюции, являются результатом точечных нелетальных мутаций, которые накапливаются в течение определенного времени. Такие мутации могут быть выявлены, если они встречаются на участках генома, кодирующих метаболические ферменты, участвующих в регуляции синтеза ДНК, а также белков, определяющих патогенность листерий.

видами рода Listeria, и в то же время отличаются от

свойств других представителей этого рода.
Для листерий характерен ряд температурозависимых признаков, которые по-разному проявляют ся при температуре от +4 до 37оС. Есть мнение, что эти свойства могут быть следствием адаптации микроорганизма к разным местам обитания: организму теплокровных и внешней среде.

палочки с закругленными концами, иногда почти кокки, одиночные или в

коротких цепочках (0,4-0,5 х 0,5-2 мкм). Листерии ферментируют глюкозу, каталазоположительны, оксидоотрицательны, образуют цитохромы. Оптимальная температура роста 30-37оС, хотя листерия – психрофильный микроорганизм, может расти и при 4оС. При 20-25оС листерии подвижны за счет образования перитрихиальных жгутиков, при 37оС жгутики как правило не образуются, и листерии не подвижны. Листерии не образуют споры и капсулы, факультативные анаэробы, хемоорганотрофы, не устойчивы к кислотам.

без селективных компонентов и методов. Поэтому в 80-е годы были

созданы селективные среды, значительно повышающие эффективность выделения и сократившие сроки идентификации L. monocytogenes..

и цитрата железистого аммония. Эскулин играет роль единственного источника углерода,

а цитрат железистого аммония выступает в качестве индикатора гидролиза углеводов, что позволяет с высокой степенью достоверностидифференцировать L. monocynjgenes от другой микрофлоры. Цвет среды в результате реакции продуктов гидролиза эскулина с цитратом железистого аммония меняется, что приводит к потемнению бульона или образованию черного ореола вокруг выросших колоний листерий на Оксфордском агаре и Палкам агаре.

формы:
А32 – листериоз;
А32.0 – листериоз кожи;
А32.1 – листериозный менингит и

менингоэнцефалит;
А32.7 – листериозная септицемия;
А32.8 – другие формы листериоза;
А32.9 – листероз неуточненный;
А37.2 - неонатальный (диссеменированный) листериоз.

к хинолонам и фторхинолонам,
антисинегнойным пенициллинам,
цефалоспоринам
III-IV поклления, аминогликозидам,

хлорамфениколу, карбапенемам,
ко-тримоксазолу.
В то же время данный микроорганизм устойчив или недостаточно чувствителен к таким препаратам, как бензилпенициллин, пиперациллины,
цефалопорины I поколения.
Лечение инфекции, вызванной L.monocytogenes, должно проводиться с учетом формы и характера течения заболевания, принадлежности заболевшего к группе риска развития осложнений и, естественно, чувствительности возбудителя к антибактериальным препаратам.
Выбор препаратов производится не только с учетом данных по чувствительности возбудителя in vitro, но и его преимущественно внутриклеточной локализации в тканях.

заключается в соблюдении санитарно-ветеринарных правил и санитарно-противоэпидемических мер по чувствительности

возбудителя in vitro, но и его преимущественно внутриклеточной локализации в тканях.

intermedia
Y.frederikseni

концами. Все виды подвижны, кроме Y.pestis – возбудителя чумы. Подвижность

выражена после выращивания при t ниже 30°С; при t 37°С иерсинии не подвижны. Размер и полиморфизм зависит от возраста культуры, температуры и питательных сред для выращивания.Некоторые виды могут продуцировать капсульное вещество, а Y.pestis образует капсулу. При низких температурах капсульного вещества образуется больше. Температура оптимума роста иерсиний составляет 20 – 30 °С; нижняя граница - 0-2°С , верхняя граница - 39°С; оптимум рН - 5,8 –9,6. Рост бактерий при t 10 - 12°С сопровождается замедлением лаг – фазы, что позволяет применять низкотемпературное культивирование (при 4°С).

выделяют соматический О-, жгутиковый Н – и Ar вирулентности (Vi

- Ar и W - Ar), расположенный на наружной мембране. Бактерии серогруппы О 10 имеют фимбрильный Ar, обозначаемый как К1. Традиционно серотипирование Ar Y. Enterocolitica осуществляется по общей схеме

внешней среде, размеры клеток, темп размножения, скорость метаболических процессов и

даже служит фактором выбора альтернативных процессов обмена веществ, регулирующих синтез ферментов. Все иерсинии могут образовывать:
гладкие (S-формы),
шероховатые (R –формы)
переходные (S - R формы).