Микробиологические методы исследования в пульмонологии

А.Г.
Астана 2017г.
АО «Медицинский Университет Астана»
Кафедра Внутреннних болезней интернатуры

и обострения хронического заболевания с целью определения этиотропной терапии и

контроля за ее эффективностью.

в специальную стерильную посуду (выдаётся в лаборатории).

- Сбор мокроты производят

утром натощак.

- Мокроту собирают до начала антибактериальной терапии.

- Перед началом сбора мокроты пациенту необходимо почистить зубы и прополоскать рот кипячёной водой для удаления остатков пищи и микрофлоры ротовой полости.

- Сбор мокроты производят во время приступа кашля (если мокрота отделяется плохо, предварительно необходимо принять отхаркивающее средство).

- Собранный биоматериал необходимо доставить в лабораторию в течение 1 - 1.5 часов. Мокрота может храниться в течение 2-х часов при комнатной температуре, 5-6 часов при температуре 2-8°С.

Мокрота

Streptococcus gr.Viridans, Corynebacterium spp., Neisseria spp., Staphylococcus spp. и др.

В большинстве случаев результаты микроскопических исследований носят ориентировочный характер (например,

определяют отношение возбудителей к окраске), так как многие микроорганизмы лишены морфологических и тинкториальных особенностей. Тем не менее микроскопией материала можно определить некоторые морфологические признаки возбудителей (наличие ядер, жгутиков, внутриклеточных включений и т.д.), а также установить факт наличия или отсутствия микроорганизмов в присланных образцах.

результаты микробиологических исследований позволяют точно установить факт наличия возбудителя в

исследуемом материале. Идентификацию чистых культур (до вида микроорганизма) проводят с учётом морфологических, тинкториальных, культуральных, биохимических, токситенных и антигенных свойств микроорганизма. Большинство исследований включает определение чувствительности к антимикробным препаратам у выделенного возбудителя. Для эпидемиологической оценки роли микроорганизма проводят внутривидовую идентификацию определением фаговаров, биоваров, резистентваров и т.д.

исследуемом материале и на обнаружение возбудителя (особенно при незначительном исходном

содержании в исследуемом образце). Методы включают заражение лабораторных животных исследуемым материалом с последующим выделением чистой культуры патогена либо установлением факта присутствия микробного токсина и его природы. Моделирование экспериментальных инфекций у чувствительных животных — важный инструмент изучения патогенеза заболевания и характера взаимодействий внутри системы микроорганизм-макроорганизм. Для проведения биологических проб используют только здоровых животных определённых массы тела и возраста. Инфекционный материал вводят внутрь, в дыхательные пути, внутрибрюшинно, внутривенно, внутримышечно, внутрикожно и подкожно, в переднюю камеру глаза, через трепанационное отверстие черепа, субокципитально (в большую цистерну головного мозга).

важный инструмент в диагностике инфекционных заболеваний. Особую ценность они имеют

в тех случаях, когда выделить возбудитель не представляется возможным. При этом необходимо выявить повышение титров AT, в связи с чем исследуют парные образцы сыворотки, взятые в интервале 10-20 сут (иногда этот интервал может быть более длительным). AT обычно появляются в крови на 1-2-ю неделю заболевания и циркулируют в организме относительно долго, что позволяет использовать их выявление для ретроспективных эпидемиологических исследований. Определение классов Ig чётко характеризует этапы инфекционного процесса, а также может служить косвенным прогностическим критерием, Особое значение имеют методы выявления микробных Аг. В значимых количествах они появляются уже на самых ранних сроках, что делает их идентификацию важным инструментом экспресс-диагностики инфекционных заболеваний, а количественное их определение в динамике инфекционного процесса служит критерием эффективности проводимой антимикробной терапии.