Вестерн блоттинг

специфичных белков в образце.

Вестерн-блоттинг был разработан в лаборатории Джорджа Старка

(Стенфорд, Великобритания)
Название вестерн-блот было дано технике У. Нейлом Бурнеттом и является игрой слов от названия Саузерн Блоттинг (Southern blotting). - методики определения ДНК, разработанной
ранее Эдвином Саузерном

было дано технике У. Нейлом Бурнеттом и является игрой слов

от названия Саузерн Блоттинг (Southern blotting).
Саузерн блоттинг- методики определения ДНК, разработанной ранее Эдвином Саузерном
Аналогичный метод определения РНК называется Нозерн Блоттинг (Nothern blotting).
Детекция посттрансляционных модификаций белков называется Истерн Блоттингом (Eastern blotting).

1. Разделение белков методом SDS-PAGE гель-электрофореза/
С помощью гель-электрофореза белки

разделяются в полиакриламидном геле.
2. Перенос белков на мембрану
3. Блокирование и Детекция
Затем их детектируют с использованием антител:
сначала белки связываются с первичными (моно- или поликлональными) антителами, которые в свою очередь связываются
со вторичными антителами, конъюгированными с ферментами (пероксидазой хрена или щелочной фосфатазой).

наполнителей в объеме или в виде плоских листов или полосок

стрипов
(англ. strip); стрипы используют в методиках типа иммуноблота и иммунохроматографии;
в пористых материалах существенно больше площадь, на которой сорбирован один из участников взаимодействия; другие реагенты диффундируют по порам.

разрешения достигается за счет электрофоретического разделения белков и специфичности моноклональных

антител.
Визуализация исследуемого белка достигается путем проведения соответствующей биохимической реакции с образованием продукта, который определяется колориметрическим,хеми-люминесцентным, флюоресцентным методами детекции.  

клеточной культуры. В большинстве случаев, твёрдые ткани сначала измельчаются механически

с использованием блендера (для образцов большого объёма), с использованием гомогенизатора (меньшие объемы), или обработки ультразвуком.
Различные детергенты детергенты, соли и буферы могут быть применены для улучшения лизиса клеток и растворения белков. Ингибиторы протеаз и фосфатаз часто добавляются для предотвращения расщепления образцов их собственными ферментами. Подготовка тканей часто выполняется при низких температурах, чтобы избежать денатурации белка.

Цельная ткань

Клеточная культура

Механическое измельчение

Измельчение гомогенизатором

Обработка ультразвуком

Измельчение в жидком азоте

Детергенты, соли, буферы

Ингибиторы протеаз, фосфатаз

Условия, улучшающие
пробоподготовку

Низкие температуры

производит гомогенизацию образцов за счет их встряхивания
в микропробирках или чашах вместе с твердыми шариками

присутствии SDS по Лэмми. 

SDS вызывает денатурацию белков и поддерживает их

в денатурированном состоянии, для разрушения вторичных и третичных структур белков используют восстановители дисульфидных связей
Подлежащие анализу белки в присутствии додецилсульфата натрия приобретают одинаковый отрицательный заряд, что делает возможным их разделение в зависимости только от молекулярной массы.

геля с низкой концентрацией (концентрирующий гель), что позволяет их сконцентрировать

перед переходом в разделяющий гель (с более высокой концентрацией), где происходит разделение белков в зависимости от молекулярной массы.
Белки мигрируют в электрическом поле через акриламидный гель к аноду, при этом белки меньшего размера двигаются быстрее.

Отличия в скорости продвижения — электрофоретической
подвижности приводит к разделению белков на полосы.

Как правило, одну из «дорожек» оставляют для маркеров молекулярной массы (смеси белков с известными массами).

в гелях красителем Кумасси или серебром
окрашивание белков в гелях

красителем Кумасси

окрашивание белков в гелях серебром

получить путем визуальной оценки геля.
Однако, с целью получения достоверных

данных и надлежащего документирования результатов гель сканируют на просвет при помощи высокочувствительного денситометра, что позволяет надежно определять не только положение белков в геле, но и оптическую плотность белкового пятна. А с помощью специального программного приложения можно определить такие параметры как электрофоретическая подвижность белка, его чистота, количество белка в пятне и др.
Определение молекулярной массы исследуемого белка предполагает необходимость калибровки геля по молекулярным массам. Калибруют гель относительно молекулярных масс белков-маркеров, которые разделяют параллельно с исследуемым образцом.

выше концентрация акриламида, тем лучше разделение низкомолекулярных белков. Низкая концентрация

акриламида улучшает разрешающую способность гель-электрофореза для высокомолекулярных белков.

дальнейшей детекции, их вместе с полоской геля переносят на мембрану,

изготовленную из нитроцеллюлозы или  PVDF.

Мембрана накладывается поверх геля, а поверх неё кладут стопку фильтровальной бумаги.
Метод переноса белков называется электроблоттингом и использует электрический ток, который переносит белки из геля на мембрану.
Белки перемещаются из геля на мембрану с сохранением своего расположения. В результате этого «промакивания» (blotting) процесса белки удерживаются на тонком поверхностном слое мембраны для детекции.
Оба варианта мембран используют из-за их свойства неспецифично связывать белки.
Связывание белков основано как на гидрофобных взаимодействиях, так и на электростатических взаимодействиях между мембраной и белком.
Нитроцеллюлозная мембрана дешевле PVDF, но гораздо более хрупкая и хуже выдерживает повторное нанесение меток.

быть приняты меры по исключению взаимодействия между мембраной и антителом,

используемым для детекции целевого белка (ибо антитело само по себе белок).
Блокирование неспецифичных связываний достигается помещением мембраны в разбавленный раствор белка — обычно это бычий сывороточный альбумин или нежирное сухое молоко или желатин с небольшим процентом детергента типа Tween-20.

Блокирование – один из важных этапов проведения эффективного Вестерн блоттинга

местах, где не прикрепился целевой белок. Поэтому, при добавлении антител,

им (антителам) нет свободного места на мембране, куда бы они могли прикрепиться, кроме сайтов связывания на специфичных целевых белках. Этот фоновый «шум» в окончательном продукте вестерн блота приводит к чистым результатам и исключению ложно-положительных.

антитела, что ускоряет процесс
• возможность использовать первичные антитела с разными

метками
 Недостатки
• связывание с ферментативной меткой может снижать иммунореактивность первичного антитела
• высокая стоимость первичных антител
• проблема выбора антитела и низкий сигнал

преимущества
• Вторичное антитело усиливает сигнал (несколько вторичных антител могут связываться с одним первичным)
• Имеется широкий выбор вторичных антител
• Одно вторичное антитела может быть использовано для детекции различных специфичных антител
• связывание с ферментативной меткой вторичного антитела не влияет на иммунореактивность первичного антитела
• Замена вторичного антитела может способствовать изменению метода детекции
 недостатки
• Вторичные антитела способствуют образованию сайтов неспецифичного связывания
• Дополнительные этапы работы

антителом (первичным).
Раствор антител и мембрана могут быть вместе закрыты

и инкубированы от 30 минут до оставления на ночь. Также они могут быть инкубированы при различных температурах, при повышенной температуре наблюдается лучшее связывание.
После удаления несвязавшихся первичных антител, мембрану выдерживают со вторичными антителами и в соответствии с их целевыми свойствами, как правило называются по типу «anti-mouse», «anti-goat».

и связываются с большинством первичных антител. Вторичные антитела обычно связывают

щелочной фосфатазой или пероксидазой хрена.
Наиболее распространенные, связанные с пероксидазой хрена вторичные антитела используются для разрезания хемилюминесцентного агента, и продукт реакции производит люминесцентное излучение пропорционально количеству белка.

Лист светочувствительной фотографической пленки помещается напротив мембраны и подвергается действию излучения реакции, создавая изображение полос антител на блоте.
Более дешевый, но менее чувствительный подход с использованием 4-хлорнафтольного окрашивания в смеси с 1 % перекисью водорода, что дает темно-коричневое окрашивание, которое регистрируется без использования специальной фотографической пленки.

со связанным флюорофором, который излучает в ближней инфракрасной области (NIR).

Свет, излучаемый флюоресцентным красителем, постоянен и делает флюоресцентную детекцию более точным и чувствительным способом измерения разницы в сигнале, производимом белками, которые мечены антителами, на вестерн блоте.
Третий альтернативный метод использует радиоактивную метку вместо фермента, связанного с вторичным антителом (с радиоактивным изотопом йода). Другие методы безопаснее, быстрее и дешевле, поэтому радиоактивная детекция используется редко.

белки лишь по одному бэнду на мембране. Приблизительный размер вычисляют

сравнивая окрашенные бэнды с маркерами молекулярной массы, добавленными при электрофорезе.
Процесс повторят с структурными белками, такими как актин или тубулин, которые не меняют между экспериментами. Количество целевого белка зависит от количества контрольного структурного белка между группами. Этот прием обеспечивает коррекцию количества общего белка на мембране в случае ошибки или неполного переноса.

биологии, биохимии, генетике и в других естественно-научных дисциплинах.
В медицине: диагностика ВИЧ (СПИД), болезнь

лайма,Helicobacter Pylori, вирус Эпштейн-Барр

вторичным антителом
7. отмывка
8. обработка хемилюминесцентной системой детекции
9. детекция с помощью

рентгеновской пленки
10. анализ

сибирской язвы
Диагностика токсоплазмоза (Т); 
группу инфекций – гепатиты, сифилис, хламидиоз, листериоз

и др. (О); 
краснуху (R); 
цитомегаловирусную инфекцию (С); 
герпес (Н).
Вирус Эпштейн-Барр

В этом случае на тестовые стрип-мембраны нанесены только клинически значимые антигены (нативные, синтетические или рекомбинантные) в определенном порядке. Такой подход используют для дифференциальной диагностики нескольких инфекций на одном стрипе