Медицинская академия имени С.И. Георгиевского

Студентка Л1-с-о-205 (1)
1-го медицинского факультета
лечебное дело

Симферополь 2020

в единое ядро оплодотворенного яйца (зиготы).

Готовность к оплодотворению определяется выделением

направительных телец.

Особенности процесса оплодотворения:

Функции:
половая (комбинирование генов двух родителей) – передача генов от родителей потомкам;
репродуктивная (создание нового организма) – включает инициацию в цитоплазме яйца тех реакций, которые позволяют продолжать развитие.

Роль спермия:
активация яйца – побуждение яйцеклетки к началу развития;
внесение в яйцеклетку генетического материала отца .

Классификация:

по количеству сперматозоидов, участвующих в оплодотворении:
моноспермное – во внешней среде;
полиспермное – в половых путях самки.

по месту проникновения сперматозоида в яйцеклетку:
наружное – во внешней среде;
внесение – в половых путях самки.

до соприкосновения гамет друг с другом;

контактные взаимодействия – начинаются

с момента контакта сперматозоида с третичной оболочкой яйцеклетки;

проникновение спермия в яйцеклетку – в её основе лежит слияние плазматических мембран спермия и яйца;

слияние генетического материала – приводит к формированию диплоидного ядра зиготы.

для водных организмов, с наружным типом оплодотворения.

встреча спермиев и

яиц при их низкой концентрации в среде;
предотвращение оплодотворения яиц спермиями другого вида.

Видоспецифичные привлечение спермиев и их активация (кишечнополостные, моллюски, иглокожие, первичнохордовые и т.п.)

Хемотаксис – движение по градиенту концентрации какого-либо вещества.

У морских ежей (пептиды студенистой оболочки яиц):
сперакт (10 а.к.)
резакт (14 а.к.)

пузырька (выброс протеолитических ферментов)
активация Na+/H+-обменника (защелачивание цитоплазмы)
полимеризация глобулярного

актина (образование акросомного выроста)
активация динеиновой АТФ-азы (увеличение подвижности спермия)
повышение осмотического давления (способствует удлинению акросомального выроста)

1 – акросомная мембрана; 2 – плазматическая мембрана спермия; 3 – глобулярный актин; 4 – акросомные ферменты; 5 – актиновые микрофиламенты; 6 – акросомный вырост

Акросомная реакция спермия морского ежа

акросомная реакция

белка (биндина), расположенного на поверхности акросомного выроста.

На желточной оболочке яйца

находится гликопротеиновый комплекс (рецептор), способный образовывать связи с биндином.

Локализация биндина на акросомном выросте (по Гилберту, 1993)
ДАБ – диамино-бензидин.

– приобретение спермием оплодотворяющей способности

Половые пути самки принимают активное участие

в процессе оплодотворения.

Суть процесса капацитации:
изменение структуры клеточной мембраны;
Снижение соотношения холестерин : фосфолипиды в мембране спермия (молекулы альбумина половых путей самки отнимают холестерин у спермия) – дестабилизация мембраны акросомного пузырька – возможность осуществления акросомной реакции.

удалении с поверхности спермия особых факторов
оставаясь на поверхности спермия “coating factors”препятствуют оплодотворению

прозрачной оболочке яйцеклетки)

В спермиях, не прошедших капацитации, активные центры фермента

блокированы остатками N-ацетилглюкозамина (NАг) и галактозы (Гал).

При капацитации углеводы отделяются от поверхности спермия, освобождая активные центры гликозилтрансфераз.

Гликтозилтрансферазы узнают N-ацетилглюкозаминовые остатки в молекуле гликопротеина, расположенного на поверхности прозрачной оболочки (рецептор спермия).

Схема узнавания спермием и яйцом друг друга у млекопитающих (схема капацитации)

и проникновения спермиев собственного вида;
Абсолютной (100 %) защиты от проникновения

спермия другого вида не даёт (e.g. лошадь + осёл = мул), однако удаление блестящей оболочки позволяет оплодотворять яйцеклетку спермиями другого вида.

Типы гликопротеинов (zona proteins, ZP):
ZP1 – сшивает белки ZP2 и ZP3, находясь перпендикулярно по отношению к ним;
ZP2 – расположен параллельно поверхности яйца. Взаимодействует с акрозином (протеолитический фермент акросомы), лизирующим блестящую оболочку;
ZP3 – расположен параллельно поверхности яйца. Необходим для взаимодействия с рецепторами спермия: терминальной галактозой, N-ацетилглюкозамином, гликопротеином плазматической мембраны.

образованием акросомного выроста.
Проникновение спермия у млекопитающих:
Акросомная реакция у млекопитающих:
сперматозоид

контактирует с яйцом не вершиной, а боком;
диссоциация наружной мембраны головки сперматозоида и мембраны акросомы (на поверхности, расположенной вдоль головки сперматозоида);
ферменты акросомы растворяют клетки лучистого венца;
сперматозоид вступает в контакт с блестящей оболочкой

Membrane cofactor protein (MCP; CD46) экспрессируется на внутренней мембране акросомы.

микроскопия): а – интактная акросома, b – связывание спермия и

блестящей оболочки, с – проникновение спермия через блестящую оболочку;
В – локализация протеасом у спермия, связанного с блестящей оболочкой яйцеклетки;
С – локализация протеасом у спермия, проходящего через блестящую оболочку.

PM – плазмалемма, IAM (OAM) – внутренняя (наружная) мембрана акросомы, АCMX – матрикс акросомы, содержащий протеасомы (зелёный цвет), ZPC – рецептор спермия (красный цвет, для части B), DNA – ДНК (синий цвет).

акросомы спермия и мембраны яйцеклетки, их разрывом и соединением свободных

концов.

Формируется единая наружная мембрана, ограничивающая канал, через который ядро и проксимальная центриоль сперматозоида проникают в яйцо.

Контакт между сперматозоидом и яйцом вызывает полимеризацию актина и увеличение размеров микроворсинок яйца – формируется воспринимающий бугорок (гомологичен акросомному выросту).

Проникновение спермия в яйцеклетку хомячка (по Yanagimachi, R. and Noda, Y.D. 1970. Electron microscope studies of sperm incorporation into the hamster egg. American Journal of Anatomy 138:429-462).

к гибельным
последствиям.

Возникает триплоидное ядро (каждая хромосома представлена тремя копиями).

Полноценное

распределение триплоидного набора между клетками невозможно.
Одни клетки получают лишние копии некоторых хромосом, тогда как у других эти хромосомы отсутствуют (атипичное развитие и гибель эмбриона).

Быстрый блок полиспермии (1 мин) достигает этой цели путем изменения электрического потенциала плазматической мембраны яйца.

Открытие ионных каналов в яйце индуцируется прикреплением к нему спермия.

Мембранный потенциал в яйце морского ежа до и после оплодотворения

спермия.

В её основе Ca2+-зависимое слияние кортикальных гранул с плазмалеммой (выделение

содержимого в область между плазмалеммой и желточной оболочкой

У млекопитающих кортикальная реакция не вызывает образования оболочки оплодотворения (реакция прозрачной оболочки или zona reaction)

Схема оплодотворения у морского ежа
(по Гилберту, 1993)

мембраны яйцеклетки;
сперморецепторная гидролаза: освобождает поверхность яйца от осевших на

желточной оболочке сперматозоидов, лизируя сайты их соединения;
мукополисахариды: создают осмотический градиент, обусловливающий поступление воды из цитоплазмы яйца в пространство между желточной оболочкой и плазматической мембраной (перивителлиновое пространство);
пероксидаза: вызывает затвердевание оболочки оплодотворения (образова-ние поперечных связей между остатками тирозина соседствующих белков);
гиалин: поддерживает бластомеры в период дробления.

Формирование оболочки
оплодотворения (по Гилберту, 1993):
1 – оболочка оплодотворения; 2 – гиалиновый слой

активация G-белка
стимуляция активности фосфолипазы С – расщепляет фосфатидилинозитол-4,5-бифосфат (PIP2)

на диацилглицерол – DAG (связан с мембраной) и инозитолтрифосфат – IP3 (диффундирует в цитоплазму).
активация Na+/H+-антипортера (DAG, посредством протеинкиназы С) – усиление белкового синтеза, репликации ДНК, перемещения морфогенетических детерминант в цитоплазме.
высвобождение Ca2+ (из внутриклеточных депо) – посредством IP3 , что приводит к экзоцитозу кортикальных гранул (медленный блок полиспермии), а также активация НАД-киназы (синтез липидных компонентов мембраны de novo).

цитоплазме развивающихся взрослых организмов не обнаруживаются (митохондрии передаются от материнского

организма, а центриоли от отцовского, хотя в яйцеклетках млекопитающих они изначально присутствуют в яйцеклетке).

Ядро яйца преобразуется в женский пронуклеус, а сперматическое ядро в мужской пронуклеус.

После проникновения в цитоплазму мужской пронуклеус поворачивается на 180о (центриоль спермия оказывается располагается между мужским и женским пронуклеусом). Ее микротрубочки удлиняются, вступая в контакт с женским пронуклеусом, после чего пронуклеусы перемещаются навстречу друг другу.

12 часов (у морского ежа – всего 1 час).

Контакт пронуклеусов

приходит к разрушению их ядерных оболочек, конденсации хроматина и образованию видимых хромосом (располагаются на общем митотическом веретене первого деления дробления ).
У млекопитающих истинно диплоидное ядро появляется у 2-х клеточного эмбриона.

Схема процесса оплодотворения у хомячка (по Гилберту, 1993):
А – спермий прикрепляется к яйцу; Б – прикрепление спермия к яйцу и взмахи его хвоста вызывают вращение яйца;
В – плазматические мембраны спермия и яйца сливаются;
Г – формируются пронуклеусы;
Д – начинается первое деление дробления; Е – двух клеточный зародыш

яйцеклеток интенсивно перемещаются друг относительно друга.

Ооплазматическая сегрегация – расслоение (отмешивание)

различных частей цитоплазмы яйцеклетки (зиготы).

Ооплазматическая сегрегация влияет не на конечную дифференцировку клеток, а на ближайшие этапы развития – дробление и гаструляцию (проморфогенез).

Партеногенез:

Развитие, происходящее без оплодотворения (участия сперматозоида).

Естественный партеногенез: осы, пчелы, ряда чешуекрылых, виды ящериц и змей, типичен для летних поколений ряда ракообразных и коловраток. Различают гиногенез и андрогенез;
Искусственный партеногенезу: стимуляция развитие неоплодотворенных яиц тутового шелкопряда (Тихомиров, 1886).

У млекопитающих партеногенетическое развитие останавливается на ранних стадиях. В женских хромосомах заблокированы участки ДНК, присутствующие в активной форме в мужских хромосомах (у млекопитающих между пронуклеусами имеются функциональные различия).